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ARS, Aborto Ricorrente Spontaneo

Da dottvolpicelli
Ultimo aggiornamento 2021-04-08  11:57:51
ARS (Aborto Ricorrente  Spontaneo)
Si definisce aborto l’interruzione della gravidanza prima dei 180 giorni di amenorrea (28 settimane). Dopo 180 giorni di epoca gestazionale si parla di morte fetale endouterina. L’aborto spontaneo  si definisce ricorrente (ARS) quando si ripete per  ≥3 volte.  Può essere emotivamente e fisicamente traumatizzante per qualsiasi coppia, che sperimenta la ripetuta perdita della prole e con l’ansia di un ulteriore aborto spontaneo. È anche molto impegnativo e frustrante per il clinico, poiché circa la metà dei casi rimarrà senza diagnosi e viene classificata come ARS  idiopatica o inspiegabile (1-7).

Frequenza: circa il 20% di tutte le gravidanze esita in aborto. l’1% delle donne in età fertile ha avuto almeno 2 aborti spontanei. L’incidenza dell’aborto spontaneo varia nelle diverse popolazioni, tenendo conto della variazione nella sensibilità di rilevare le perdite  di gravidanze 
biochimiche (1-3). Per il fatto che le perdite di gravidanze biochimiche possano essere così comuni nella popolazione generale, sottolinea la necessità di considerare solo le perdite di gravidanze cliniche come aborti quando si effettua una diagnosi di ARS. Ciò contribuirebbe a ridurre i rinvii, le indagini e i trattamenti non necessari.
EZIOLOGIA:  La fisiopatologia alla base dell’ARS è incredibilmente diversificata e coinvolge, oltre alla ginecologia, aree come l’ematologia, l’endocrinologia, l’immunologia e la genetica. E’  un’autentica scatola nera (“black box”) difficile da decifrare nonostante il supporto di numerose tecnologie ed esperienze.. 
  1. Eziologia sconosciuta (ARS idiopatico): si verifica per il 50-60% del totale degli aborti spontanei. Possono essere descritti due tipi di ARS ad eziologia sconosciuta inspiegabile: di tipo I, che si verifica casualmente nelle donne che non hanno patologie di base e per esse la prognosi è buona; e ARS inspiegabile di tipo II, che si verifica a causa di una patologia sottostante che attualmente non è ancora identificata dalle indagini cliniche di routine e ha una prognosi più sfavorevole. Le donne con ARS idiopatico e che non ricevono alcun trattamento hanno una prognosi notevolmente buona, con un tasso di gravidanza a termine e “bambino in braccio” del 75%  (6-10).
  2. L’incontinenza cervico-istmica rappresenta il fattore di maggior rilievo nell’ARS da cause note (11-13).
  3. Patologia uterina: l’incidenza del fattore uterino nelle pazienti con aborto ricorrente è stata pari al 23,5%.  Malformazioni uterine e miomi sottomucosi sono responsabili di ARS in conseguenza della riduzione del volume uterino utile per l’accrescimento della gravidanza. Spesso si associano a incontinenza cervicale (11-14).
  4. Successione di gravidanze a breve intervallo di tempo (<3 mesi) (15,16)
  5. alterata vascolarizzazione trofoblastica da iperproduzione di trombossano (effetto trombotico) e contemporanea diminuzione di prostaciclina (effetto fibrinolitico) con formazione di trombi e diminuzione dell’irrorazione trofoblastica. E’ conseguente a deficit del fattore XII, a trombofilia ereditaria o acquisita oppure a polimorfismo del gene VGEF.  Il deficit del fattore XII induce aumento dell’attività fibrinolitica (7). Trombofilia secondaria: spesso si manifesta per la prima volta clinicamente in gravidanza. La gravidanza di per sé rappresenta una condizione di ipercoagulabilità. Si assiste ad un aumento del livello di fibrinogeno, che a fine gravidanza raggiunge valori doppi rispetto a quelli extra-gravidici e aumento dei fattori II, VII, VIII, X e XII. La Proteina S diminuisce; AT III e proteina C rimangono invariati ma aumenta la resistenza alla proteina C attivata e possono ritrovarsi anticorpi tipo ANA, APL e ACA. Le malattie tromboemboliche inoltre possono innescare episodi di eclampsia, HELLP Sindrome, gestosi, IUGR (17-19).
  6. Alterazioni della recettività endometrialecorrelata alla presenza di inadeguata decidualizzazione endometriale a sua volta dovuta a iposecrezione di progesterone da parte del corpo luteo gravidico e iposecrezione di prolattina endometriale. A favorire l’impianto embrionale concorrono in modo significativo la secrezione locale di prostaglandine (PGF2α, PGE2, PGI2 e PGD2),  l’intervento di cellule NK e l’azione di uno specifico pattern di proteine coinvolte nella adesione cellulare (Integrine, citochine e fattori di crescita) come interleuchina 1, IL 11. IL 15, LIF (fattore di inibizione della leucemia),  EGF, IGF-I (20-41). Nelle paienti ARS risultano differenze nell’espressione di alcune cellule e molecole immunitarie. Si osservano differenze nella popolazione di cellule CD56 + e ci sono prove di un’alterazione nel rapporto delle citochine Th1 e Th2 prodotte dai monociti del sangue periferico (PBMC) e dai cloni delle cellule CD4 + decidue.  Vi sono anche alcune prove di differenze nella produzione di citochine endometriali, e in particolare una diminuzione della produzione di citochine pro-infiammatorie come l’interleuchina-6. Le cellule NK decidue entrano in contatto diretto con le cellule placentari allogeniche di derivazione fetale responsabili del rimodellamento dell’arteria uterina durante il primo trimestre di gravidanza. Qui, possono servire a supportare l’invasione del trofoblasto, il rimodellamento vascolare e la crescita vascolare nella decidua attraverso la produzione di una varietà di citochine e altri fattori angiogenici piuttosto che servire le funzioni citotossiche più tipiche delle loro controparti periferiche. 27 , 28 , 29 , 30  Sebbene questo particolare tipo di cellula differisca da cellule simili isolate dalla periferia, la maggior parte crede che sia una variante delle cellule NK. In tal caso, il sito di impianto rappresenta il più grande accumulo di cellule NK in qualsiasi stato di salute o malattia umana. Le indagini hanno dimostrato che, piuttosto che essere derivati ​​di cellule NK periferiche, le cellule NK deciduali derivano probabilmente da cellule NK endometriali che subiscono proliferazione durante la gravidanza. 31 Data questa relazione, è improbabile che le misurazioni delle cellule NK periferiche siano buoni predittori della competenza delle cellule NK decidue o dei loro effetti sugli esiti della gravidanza  (102-109).  
  7. Aberrazioni cromosomiche fetali e di coppia:  In caso di cromosomopatia fetale, si verifica un aborto spontaneo nel 48% dei casi. La principale cromosomopatia fetale è rappresentata dall’aneuploidia embrionale. Poiché gli errori di segregazione cromosomica meiotica negli ovociti rappresentano la maggior parte delle aneuploidie embrionali;  esse aumentano con l’età materna. La presenza di patologia genica di coppia si riscontra nello 0.5-10%  dei casi di ARS (42-57).
  8. Fattori immunologici mucosi nell’interfaccia materno-fetale  Si ipotizza che il rigetto immunologico del feto dovuto al riconoscimento degli antigeni paterni da parte del sistema immunitario materno, con conseguente anormalità delle cellule immunitarie e produzione di citochine, sia una delle cause di ARS idiopatico.  I fattori immunolgici endometriali sono responsabili di ARS nel 20% circa dei casi. (110-113).   
  9. Lupus eritematoso sistemico (LES) e Sindrome da anticorpi antifosfolipidi (APS) –  Il Lupus Eritematoso Sistemico (LES) è una patologia infiammatoria sistemica e cronica di origine multifattoriale, prevalentemente autoimmune che comporta manifestazioni estremamente polimorfe, cutaneo-viscerali, che si manifestano a poussées, associate alla presenza di autoanticorpi antinucleo (ANA), anticorpi antifosfolipidi (APL) e anticorpi anticardiolipina (ACA). Colpisce prevalentemente (90%) le donne. Le manifetazioni cliniche LES si accentuano durante le mestruazioni e le gravidanze. La sindrome da anticorpi antifosfolipidi (APS) caratterizzata da APL e ARS, frequentemente è associata e secondaria al LES ma può esistere anche da sola o essere associata ad altre patologie autoimmuni. L’APS è la più comune tra le  trombofilie acquisite, ha una stretta correlazione causale  con i fenomeni trombotici placentari e il conseguente esito avverso della gravidanza attraverso alterazioni del metabolismo di prostaciclina/trombossano. Le alterazioni locali in queste vie a livello dell’interfaccia materno-fetale potrebbero promuovere costrizione vascolare, mancata invasione trofoblastica, adesione piastrinica e infarto placentare. Gli anticorpi antifosfolipidi sono presenti nel 15% delle pazienti ARS e solo nel 2% delle donne con basso rischio ostetrico. Allo stesso modo, la positività degli anticorpi antifosfolipidi è stata collegata a riduzioni dei livelli di prodotti antitrombotici placentari, come l’annessina V, tra le donne con ARS. A sostegno di questo concetto, è stato dimostrato che l’aterosclerosi si sviluppa rapidamente nelle arterie spirali delle pazienti positivi agli anticorpi antifosfolipidi  (115-128). 
  10. Infezioni  l’infezione è una causa occasionale di aborto spontaneo sporadico e, coerentemente con la probabilità statistica, l’aborto spontaneo ricorrente a causa dell’infezione si verifica con una frequenza molto bassa. L’esposizione a un agente patogeno che può stabilire un’infezione cronica che può diffondersi alla placenta in una paziente immunocompromesso è probabilmente la situazione di rischio più ovvia per l’aborto abituale. Nella pratica medica di routine, non è necessario o efficiente schermare universalmente l’imprevisto, ma è necessario essere consapevoli delle rare possibilità. La maggior parte dei pazienti con una storia di aborto spontaneo ricorrente non trarrà beneficio da un ampio workup diagnostico per le possibili  infezioni (61-63)
  11. Disordini ormonali: particolarmente frequenti appaiono le tireopatie e la policistosi ovarica  (64-74). Gli ormoni riproduttivi hanno effetti drammatici sull’immunità mediata dalle cellule periferiche. La gonadotropina corionica umana (hCG), gli estrogeni e il progesterone hanno dimostrato di essere potenti immunomodulatori e capaci di favorire, a livello deciduale, la neoangiogenesi, l’invasione trofoblastica delle aa. radiali e la sintesi di numerosi fattori di crescita e integrine; insomma a favorire l’impianto della blastula.  L’HCG incrementa il numero delle cellule TREG (Regulatory T cells) sull’interfaccia materno-fetale garantendo così l’immunotolleranza durante il periodo gestazionale. E’ noto l’innalzamento dei livelli sierici di estrogeni e progesterone all’inizio della gravidanza e questi livelli elevati sono mantenuti per tutto il corso della gravidanza. Livelli elevati di progesterone inibiscono le contrazioni uterine, stimolano la decidualizzazione endometriale, induce la proliferazione e differenziazione cellulare fetale, induce la produzione di CRF (Corticotropin Releasing Factor, fattore che modera la risposta immunitaria materna), attivina A (modula positivamente la secrezione di GH-RH, FSH, la differenziazione eritrocitaria, la secrezione di HPL e la steroidogenesi placentare), e di una proteina chiamata fattore di legame indotto dal progesterone (PIBF) da parte dei linfociti; i livelli di PIBF continuano ad aumentare durante la gestazione e calano dopo il parto. Queste elevate concentrazioni di PIBF hanno dimostrato non solo di promuovere la differenziazione delle cellule T CD4 + in cellule Th2, ma anche di aumentare la produzione di citochine di tipo Th1. Inoltre, livelli ridotti di PIBF sono stati collegati a parto pretermine, aborto spontaneo e preeclampsia. È stato dimostrato che gli estrogeni migliorano le risposte immunitarie in tutte le persone dopo un trauma o emorragia significativa, sopprimono l’immunità cellulo-mediata dopo un danno termico e proteggono dal rigetto cronico dell’allotrapianto renale. In vitro, gli estrogeni sottoregolano le reazioni di ipersensibilità di tipo ritardato e promuovono lo sviluppo di risposte immunitarie di tipo Th2, in particolare se presenti in concentrazioni elevate e spesso sovrafisiologiche. È noto che il numero di cellule T reg aumenta durante la gravidanza umana e i loro livelli sono inferiori nelle donne con interruzione spontanea della gravidanza. L’esposizione agli estrogeni potenzia la funzione soppressiva e la proliferazione delle cellule T reg negli esseri umani (129-151). In altra sede (endocrinologia dell’unità feto-placentare) illustriamo l’importanza di altri ormoni necessari per la normale evoluzione della gravidanza.
  12. ETA’ PATERNA (>40 anni) ed ETA’ MATERNA (>35 anni) – il tasso di ARS aumenta significativamente con l’età dall’11% tra i 20 e i 24 anni al 51% tra i 40 ei 44 anni  (2-5).
  13. Tossico-dipendenza, alcoolismo, tabagismo  (75-81)
  14. Malattie sistemiche materne:
DIAGNOSTICA:
  1. Indagine anamnestica personale(modalità dell’evento e valutazioni degli esami eseguiti dopo aborto sporadico) e familiare
  2. Visita ginecologica
  3. USG pelvica per valutare morfologia uterina ed isterometria. L’esame USG transvaginale è indispensabile per valutare al meglio la lunghezza del canale cervicale (cervicometria) e il fenomeno “funneling” in gravidanza.
  4. Isteroscopia: per la diagnosi di eventuali miomi sottomucosi, polipi e sinechie endocavitarie (S. di Ascherman). nel corso della ISC è opportuno procede a biopsia dell’endometrio per valutarne il grado di maturazione e l’eventuale discrepanza di maturazione fra cellule epiteliali e stromali come nel caso di difetto della fase luteale (LDP).
  5. Isterosalpingografia
  6. studio genetico a carico dei sistemi PGM, ADA, AK, ABO, MNSs, Rh (D, C, E), HLA (A e B) (4).
  7. Ab anticoagulante lupus-like (LAC), Ab anticardiolipina ACA. anticorpi antifosfolipina APL, anticorpi antinucleo ANA  (58-60).
  8. Mappa cromosomica della coppia e consulenza genetica
  9. Esame istologico su prodotto abortivo
  10. Monitoraggio ormonale di base al 3° giorno del ciclo a cui si aggiunge il dosaggio della β-inibina sierica (un valore <33 pg/ml predice, oltre che una senescenza ovarica precoce, anche un’alta percentuale di aborto) (5) e dosaggio dell’ormone anti-mulleriano (AMH).
  11. Ricerca di virus TORCH e non TORCH, parvovirus, HIV, sierodiagnosi di lue, chlamydia e micoplasmi)
  12. Esame microbiologico vaginale e cervicale. Eventuale coltura endometriale
  13. Test di funzionalità tiroidea (T3, T4, FT3, FT4, TSH), Ab antimicrosomi (Ab TMS), Ab antitireoperossidasi (Ab TPO),  anticorpi antitireoglobulina (Ab Tg); linfociti CD5+/20+: studi recenti hanno associato l’aborto ricorrente ad un aumento del numero dei Studi recenti hanno associato l’aborto ricorrente ad un aumento del numero dei linfociti CD5+/20+ e degli anticorpi antitiroide (antitireoglobulina ed antitireoperossidasi) che rifletterebbe uno stato di attivazione generalizzata del sistema immunitario ed in particolare delle cellule T.
  14. Immunoglobuline sieriche, C3, C4, CH50, immunocomplessi circolanti
  15. Curva da carico orale per il glucosio
  16. Screening trombofilie: 1) Trombofilia acquisita (LES Lupus Eritematoso Syndrome) Anticorpi lupus anticoagulanti (LAC), Anticorpi anticardiolipina (ACA), Anticorpi anti-DNA, frazioni del complemento C3 e C4  2) Trombofilia congenita: PT, mutazione della protrombina (G20210A), PTT ⌈tempo parziale di tromboplastina⌉, antitrombina III, proteina C, resistenza alla proteina C attivata, proteina S, Fattore V Leiden,  omocisteinemia, esame del DNA per la ricerca della mutazione MTHFR in caso di iperomocisteinemia, folatemia.
  17. Spermiogramma base, profilo citometrico di flusso del DNA spermatico, tests funzionali
TERAPIA: anzitutto occorre ribadire la necessità di rifiutare qualsiasi trattamento non basato sull’evidenza per la maggior parte dei casi di ARS inspiegabile, poiché potrebbe causare più danni che benefici. Ciò è dimostrato in un recente studio randomizzato controllato (RCT) sul trattamento combinato relativamente sicuro di aspirina / eparina rispetto al placebo in donne con ARS idiopatico. Sebbene non siano state mostrate differenze per i tassi di natalità vivi, le donne nel gruppo di trattamento hanno riportato lividi, gonfiore e prurito significativi nei siti di iniezione dell’eparina (85).
1) Riposo e supporto psicologico: non necessariamente “a letto”; evitare di sollevare o portare pesi, evitare tutti movimenti che comportino contrazione della muscolatura addomino-pelvica. per tale motivo è opportuno evitare i rapporti sessuali anche in considerazione  che le prostaglandine contenute nel liquido seminali sono dotate di proprietà contratturanti (86).
2)Tocolitici:
– Atosiban (Tractocile) ev 1 f. soluz.iniett. 0.9 ml (7.5 mg/ml); ev 1 fl. concentrato infusione 5 ml (7.5 mg/ml); controindicazioni: preeclampsia, eclampsia, patol. placenta; alterazione FHR, MEF, PROM, diabete. Posologia: 6.75 mg/min per infus. Ev, poi per 18mg/h per 3 h, poi 6 mg/h per massimo 45 h.
3) Progesterone micronizzato – recentemente è stata messa in discussione la somministrazione di progesterone nelle prime fasi di una gravidanza a rischio di aborto anzi è dimostrato che elevati livelli sierici di progesterone nelle prime fasi di gravidanze PMA sono correlate a modesto pregnancy rate ed elevate percentuali di aborto (87,90,91,153-159).
4) Ac. Folico: 5 mg a giorni alterni durante tutta la gravidanza nei casi di iperomocisteinemia; non esiste una sufficiente evidenziazione (8)
5) Aspirina: inibisce la ciclossigenasi-1 piastrinica che riduce la produzione di thrombossano A2 (vasocostritore e aggregante delle piastrine). Sebbene l’emivita dell’aspirina sia di soli 15-20 min, la sua durata d’azione è di 7-10 giorni, corrispondente alla vita media delle piastrine. Posologia: 100 mg/die nei mesi precedenti e nelle prime fasi di gravidanza.  Per riassumere i dati relativi all’uso profilattico di ASA tra i pazienti con ARS, i dati attuali non supportano la sua applicazione clinica né tra i pazienti con ARS inspiegabile con aborti precoci (<10 settimane) né in quelli con coagulopatie (86-88,150-152,169-172).
6) HCG: non sembra apportare  alcun beneficio nel ridurre le percentuali di ARS.
7) Eparina a basso peso molecolare (Low Molecular Weight Heparin, LMWH): i risultati non sono univoci; alcuni studi riportano una notevole riduzione delle percentuali di ARS trattati con LMWH (100 UI/Kg/die) soprattutto se in associazione con aspirina a basso dosaggio (100 mg/die) ma altri numerosi studi non hanno confermato queste certezze. Tuttavia sembra esserci univocità di risultati positivi nell’utilizzare, dall’inizio di gravidanza e fino al puerperio, un’associazione di aspirina ed eparina nell’ARS causata da APS, Sindrome da Anticorpi Antifosfolipidi (trombofilia acquisita). Si preferisce la LMWH per una serie di ragioni: consente la somministrazione mediante una singola iniezione al giorno, è gravata da una minore incidenza di trombocitopenia e da un ridotto rischio di osteoporosi. La terapia va iniziata appena il test di gravidanza è positivo e fino al puerperio (160-168) .
8) Metformina (92.93)

9) Diagnosi pre-impianto nella pratica della fecondazione assistita (PGD, Preimplantation Genetic Diagnosis): permette di selezionare embrioni di buona qualità e quindi aumentare il pregnancy rate. (96-101).

TERAPIA CHIRURGICA: la rimozione di setti intrauterini non sembra apportare benefici degni di nota mentre gli interventi di metroplastica sembrano gravati di elevata probabilità di rottura d’utero durante la gravidanza. L’intervento di cerchiaggio cervicale sembra essere l’unico dotato di elevato rapporto benefici/rischi, pur senza dimenticare il rischio di contrazioni uterine indotte dallo stesso intervento.

PROGNOSI – Una prognosi per il buon esito di future gravidanze può essere stimato empiricamente tendendo conto di età materna, tipo di ARS, numero di aborti precedenti e cariotipo del prodotto abortivo.

  1. Età : più giovane è la donna, meno è probabile che l’ARS si verifichi poiché le donne di età compresa tra 40 e 44 anni hanno cento volte più probabilità di soffrire di ARS rispetto alle donne di età compresa tra 20 e 24 anni (v. tabella precedente).

  2. Tipologia di ARS – l’incidenza della perdita di gravidanza biochimica nella popolazione generale può raggiungere il 60% (Chard, 1991), mentre l’incidenza di interruzioni di gravidanza in una fase successiva, ad esempio, dopo il rilevamento dell’attività cardiaca fetale, è significativa inferiore (Bricker e Farquharson, 2002).

  3. Numero di aborti precedenti : maggiore è il numero di aborti precedenti, minore è la probabilità che l’ARS sia dovuta al caso, perché la considerazione statistica mostra che la probabilità di avere quattro o più aborti dovuti al solo caso è piuttosto bassa. Per le pazienti con una storia di ARS, il rischio di un successivo aborto  è stimato al 24% dopo due aborti, al 30% dopo tre aborti e al 40-50% dopo quattro aborti (114).

  4. Cariotipo dei prodotti del concepimento : se il cariotipo dei prodotti del concepimento è normale, è meno probabile che l’ARS si ripeta casualmente; se ciò dovesse avvenire, è più comunemente associata ad aneuploidia fetale sporadica e un cariotipo anormale dei prodotti del concepimento ( 95,96).

Conclusione

Le indagini epidemiologiche suggeriscono che la maggior parte delle donne anziane con ARS inspiegabile non ha alcuna patologia sottostante, il che spiegherebbe la prognosi complessivamente buona per questo gruppo di donne. Tuttavia, c’è un altro gruppo di donne, spesso più giovani, che hanno una specifica patologia sottostante, che è ancora non identificata, come causa dei loro ripetuti fallimenti. 

References:
  1. Holly B FordDanny J Schust: Recurrent Pregnancy Loss: Etiology, Diagnosis, and Therapy. Rev Obstet Gynecol. 2009 Spring; 2(2): 76–83.

  2. Fox-Lee L, Schust DJ. Recurrent pregnancy loss. In: Berek JS, editor. Berek and Novak’s Gynecology. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins; 2007. pp. 1277–1322.

  3. Macklon NS, Geraedts JPM, Fauser BCJM. Conception to ongoing pregnancy: the “black box” of early pregnancy loss. Hum Reprod Update. 2002;8:333–343. 
  4. Fox-Lee L, Schust DJ. Recurrent pregnancy loss. In: Berek JS, editor. Berek and Novak’s Gynecology. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins; 2007. pp. 1277–1322. 
  5. Nybo Andersen AM, Wohlfahrt J, Christens P, et al. Maternal age and fetal loss: population based register linkage study. BMJ 2000; 320:1708.
  6. Sotirios H. Saravelos,Tin-Chiu Li  Unexplained recurrent miscarriage: how can we explain it? Human Reproduction, Volume 27, Issue 7, July 2012, Pages 1882–1886,

  7. Raziel A. et al.: “The outcome of in vitro fertilization in unexplained habitual aborters concurrent with secondary infertility”. Fert Ster 1997 Jan; 67 (1), 88-92. 
  8. Clifford K, Rai R, Regan L. Future pregnancy outcome in unexplained recurrent first trimester miscarriage. Hum Reprod 1997; 12:387.
  9. Heuser C, Dalton J, Macpherson C, et al. Idiopathic recurrent pregnancy loss recurs at similar gestational ages. Am J Obstet Gynecol 2010; 203:343.e1.
  10. Kolte AM, van Oppenraaij RH, Quenby S, et al. Non-visualized pregnancy losses are prognostically important for unexplained recurrent miscarriage. Hum Reprod 2014; 29:931.
  11. Bajekal N, Li TC. Fibroids, infertility and pregnancy wastage. Hum Reprod Update. 2000;6:614–620. 
  12. Proctor JA, Haney AF. Recurrent first trimester pregnancy loss is associated with uterine septum but not with bicornuate uterus. Fertil Steril 2003; 80:1212.
  13. Raga F, Bauset C, Remohi J, et al. Reproductive impact of congenital Müllerian anomalies. Hum Reprod. 1997;12:2277–2281
  14. Lin PC. Reproductive outcomes in women with uterine anomalies. J Womens Health. 2004;13:33–39. 
  15. Wong LF, Schliep KC, Silver RM, et al. The effect of a very short interpregnancy interval and pregnancy outcomes following a previous pregnancy loss. Am J Obstet Gynecol 2015; 212:375.e1.
  16. Roberts CL, Algert CS, Ford JB, et al. Association between interpregnancy interval and the risk of recurrent loss after a midtrimester loss. Hum Reprod 2016; 31:2834.
  17. Kovalevsky G, Gracia CR, Berlin JA, et al. Evaluation of the association between hereditary thrombophilias and recurrent pregnancy loss. Arch Intern Med. 2004;164:558–563. 
  18. Pauer HU, Burfeind P, Kostering H, Emons G and Hinney B: “Factor XII deficiency is strongly associated with primary recurrent abortions”. FErtil Steril 2003;80,3:590-594.

  19. Greer IA. Thrombophilia: implications for pregnancy outcome. Thromb Res. 2003;109:73–81.

  20. Papazoglou D et al: “Vascular endothelial growth factor gene polymorphisms and idiopatic recurrent pregnancy loss”. Fertil Steril 2005;83,4:959-963.  
  21. Lockwood GM et al.: Identification of the source of inhibins at the time of conception provides a diagnostic role for them in very early pregnancy. Am J Reprod Immunol 1998 Nov; 40(5):303-8.
  22. Fan X, Krieg S, Kuo CJ, Wiegand SJ, Rabinovitch M, Druzin ML, Brenner RM, Giudice LC, Nayak NR. VEGF blockade inhibits angiogenesis and reepithelialization of endometrium. FASEB J2008;22:3571–3580.
  23. Gordon S, Martinez FO. Alternative activation of macrophages: mechanism and funcGuo Y, He B, Xu X, Wang J. Comprehensive analysis of leukocytes, vascularization and matrix metalloproteinases in human menstrual xenograft model. PLoS One 2011;6:e16840. tions. Immunity 2010;32:593–604.
  24. Hannan NJ, Salamonsen LA. Role of chemokines in the endometrium and in embryo implantation. Curr Opin Obstet Gynecol 2007;19:266–272.
  25. Henderson TA, Saunders PT, Moffett-King A, Groome NP, Critchley HO. Steroid receptor expression in uterine natural killer cells. J Clin Endocrinol Metab 2003;88:440–449. 
  26. Kelly RW, King AE, Critchley HO. Cytokine control in human endometrium. Reproduction2001;121:3–19.
  27. Koopman LA, Kopcow HD, Rybalov B, Boyson JE, Orange JS, Schatz F, Masch R, Lockwood CJ, Schachter AD, Park PJ et al. Human decidual natural killer cells are a unique NK cell subset with immunomodulatory potential. J Exp Med 2003;198:1201–1212. 
  28. Malik S, Day K, Perrault I, Charnock-Jones DS, Smith SK. Reduced levels of VEGF-A and MMP-2 and MMP-9 activity and increased TNF-alpha in menstrual endometrium and effluent in women with menorrhagia. Hum Reprod 2006;21:2158–2166. 
  29. Maybin JA, Hirani N, Brown P, Jabbour HN, Critchley HO. The regulation of vascular endothelial growth factor by hypoxia and prostaglandin F2{alpha} during human endometrial repair. J Clin Endocrinol Metab 2011b;96:2475–2483.
  30. Mints M, Hultenby K, Zetterberg E, Blomgren B, Falconer C, Rogers R, Palmblad J. Wall discontinuities and increased expression of vascular endothelial growth factor-A and vascular endothelial growth factor receptors 1 and 2 in endometrial blood vessels of women with menorrhagia. Fertil Steril 2007;88:691–697. 
  31. Moffett-King A. Natural killer cells and pregnancy. Nat Rev Immunol 2002;2:656–663. 
  32. Sharkey AM, Day K, McPherson A, Malik S, Licence D, Smith SK, Charnock-Jones DS. Vascular endothelial growth factor expression in human endometrium is regulated by hypoxia. J Clin Endocrinol Metab 2000;85:402–409.
  33. Dimitriadis E, White CA, Jones RL, Salamonsen LA. Cytokines, chemokines and growth factors in endometrium related to implantation. Hum Reprod Update. 2005;11:613–630. 
  34. Cytokines in implantation. Salamonsen LA, Dimitriadis E, Robb L.Semin Reprod Med. 2000; 18(3):299-310.
  35. Review: LIF and IL11 in trophoblast-endometrial interactions during the establishment of pregnancy.
  36. Dimitriadis E, Menkhorst E, Salamonsen LA, Paiva P.Placenta. 2010 Mar; 31 Suppl:S99-104. Epub 2010 Feb 2.
  37. Herbst RS, Review of epidermal growth factor receptor biology, in International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics, vol. 59, 2 Suppl, 2004, pp. 21–6
  38. AM Petit, J Rak, MC Hung, P Rockwell, N Goldstein, B Fendly and RS Kerbel, Neutralizing antibodies against epidermal growth factor and ErbB-2/neu receptor tyrosine kinases down-regulate vascular endothelial growth factor production by tumor cells in vitro and in vivo: angiogenic implications for signal transduction therapy of solid tumors, in American Journal of Pathology, vol. 151, nº 6, dicembre 1997, pp. 1523-30
  39. Aghajanova L (December 2004). “Leukemia inhibitory factor and human embryo implantation”. Annals of the New York Academy of Sciences1034: 176–83.
  40. Stewart CL, Kaspar P, Brunet LJ, Bhatt H, Gadi I, Köntgen F, Abbondanzo SJ (September 1992). “Blastocyst implantation depends on maternal expression of leukaemia inhibitory factor”.  Nature.  359 (6390): 76–9.
  41. Stewart CL, Kaspar P, Brunet LJ, Bhatt H, Gadi I, Kontgen F, Abbondanzo SJ. Blastocyst implantation depends on maternal expression of leukemia inhibitory factor. Nature. 1992;359:76–79. 
  42. Stephenson MD, Sierra S. Reproductive outcomes in recurrent pregnancy loss associated with a parental carrier of a structural chromosome rearrangement. Hum Reprod. 2006;21:1076–1082. 
  43. Sugiura-Ogasawara M, Ozaki Y, Suzumori N, Suzumori K. Poor prognosis of recurrent aborters with either maternal or paternal reciprocal translocations. Fertil Steril. 2004;81:367–373. 
  44. Engelbrechtsen L, Brøndum-Nielsen K, Ekelund C, Tabor A, Skibsted L; Danish Fetal Medicine Study Group. Detection of triploidy at 11-14 weeks’ gestation: a cohort study of 198?000 pregnant women. Ultrasound Obstet Gynecol. 2013 Nov;42(5):530-5.
  45.  Stephenson MD, Awartani KA, Robinson WP. Cytogenetic analysis of miscarriages from couples with recurrent miscarriage: a case-control study. Hum Reprod 2002; 17:446.
  46. Sierra S, Stephenson M. Genetics of recurrent pregnancy loss. Semin Reprod Med 2006; 24:17.
  47. Toncheva D. Fragile sites and spontaneous abortions. Genet Couns 1991; 2:205.
  48. Christiansen OB, Mathiesen O, Lauritsen JG, Grunnet N. Idiopathic recurrent spontaneous abortion. Evidence of a familial predisposition. Acta Obstet Gynecol Scand 1990; 69:597.
  49. Bianco K, Caughey AB, Shaffer BL, et al. History of miscarriage and increased incidence of fetal aneuploidy in subsequent pregnancy. Obstet Gynecol 2006; 107:1098.
  50. Smits MAJ, van Maarle M, Hamer G, et al. Cytogenetic testing of pregnancy loss tissue: a meta-analysis. Reprod Biomed Online 2020; 40:867.
  51. Hassold TJ. A cytogenetic study of repeated spontaneous abortions. Am J Hum Genet 1980; 32:723.
  52. Rubio C, Simón C, Vidal F, et al. Chromosomal abnormalities and embryo development in recurrent miscarriage couples. Hum Reprod 2003; 18:182.
  53. Munné S, Sandalinas M, Magli C, et al. Increased rate of aneuploid embryos in young women with previous aneuploid conceptions. Prenat Diagn 2004; 24:638.
  54. Warburton D, Kline J, Stein Z, et al. Does the karyotype of a spontaneous abortion predict the karyotype of a subsequent abortion? Evidence from 273 women with two karyotyped spontaneous abortions. Am J Hum Genet 1987; 41:465.
  55. Sullivan AE, Silver RM, LaCoursiere DY, et al. Recurrent fetal aneuploidy and recurrent miscarriage. Obstet Gynecol 2004; 104:784.
  56. Franssen MT, Korevaar JC, Leschot NJ, et al. Selective chromosome analysis in couples with two or more miscarriages: case-control study. BMJ 2005; 331:137.
  57. Goddijn M, Joosten JH, Knegt AC, et al. Clinical relevance of diagnosing structural chromosome abnormalities in couples with repeated miscarriage. Hum Reprod 2004; 19:1013.
  58. Franklin RD, Kutteh WH.: “Antiphospholipid antibodies (APA) and recurrent pregnancy loss: treating a unique APA positive population”. Hum Reprod 2002 Nov;17(11):2981-5
  59. Kallen CB, Arici A. Immune testing in fertility practice: truth or deception? Curr Opin Obstet Gynecol 2003; 15:225.
  60. Laird SM, Tuckerman EM, Cork BA, et al. A review of immune cells and molecules in women with recurrent miscarriage. Hum Reprod Update 2003; 9:163.
  61. Summers PR. Microbiology relevant to recurrent miscarriage. Clin Obstet Gynecol. 1994;37:722–729.
  62. Paukku M, Tulppala M, Puolakkainen M, et al. Lack of association between serum antibodies to Chlamydia trachomatis and a history of recurrent pregnancy loss. Fertil Steril 1999; 72:427.
  63. Derksen RHWM. The obstetric antiphospholipid syndrome. J Reprod Immunol. 2008;77:41–50.  
  64. Coulam C et al: “Recurrent pregnancy loss and diminished ovarian reserve measured as day 3 serum inhibin concentrations”. Fertil Steril 2003;80,suppl3,S11.
  65. Okon MA, Laird SM, Tuckerman EM, Lì TC. Serum androgen levels in who have recurrent miscarriages and their coirrelation with markers of endometrial function. Fertil Steril 1998;69:682-90 
  66. Bussen S, Sutterlin M, Steck T. Endocrine abnormalities during the follicular phase in women with recurrent spontaneous abortion. Hum Reprod. 1999;14:18–20. 
  67. Watson H,  Kiddy DS, Hamilton-Fairley D, et al. Hypersecretion of luteinizing hormone and ovarian steroids in women with recurrent early miscarriages. Hum Reprod. 1993;8:829–833.  
  68. Rai R, Backos M, Rushworth F, Regan L. Polycystic ovaries and recurrent miscarriage—a reappraisal. Hum Reprod. 2000;15:612–615.  
  69. Glueck CJ, Wang P, Goldenberg N, Sieve-Smith L. Pregnancy outcomes among women with polycystic ovary syndrome treated with metformin. Hum Reprod. 2002;17:2858–2864.  
  70. Vaquero E, Lazzarin N, De Carolis H, et al. Mild thyroid abnormalities and recurrent spontaneous abortion: diagnostic and therapeutical approach. Am J Reprod Immunol. 2000;43:204–208.  
  71. Kutteh WH, Yetman DL, Carr AC, et al. Increased prevalence of antithyroid antibodies identified in women with recurrent pregnancy loss but not in women undergoing assisted reproduction. Fertil Steril. 1999;71:843–848.  
  72. Matalon ST, Blank M, Ornoy A, Shoenfeld Y. The association between anti-thyroid antibodies and pregnancy loss. Am J Reprod Immunol 2001; 45:72.
  73. Cleary-Goldman J, Malone FD, Lambert-Messerlian G, et al. Maternal thyroid hypofunction and pregnancy outcome. Obstet Gynecol 2008; 112:85.
  74. Anselmo J, Cao D, Karrison T, et al. Fetal loss associated with excess thyroid hormone exposure. JAMA 2004; 292:691.
  75. Abel EL. Maternal alcohol consumption and spontaneous abortion. Alcohol Alcohol. 1997;32:211–219.
  76. Windham GC, Von Behren J, Fenster L, et al. Moderate maternal alcohol consumption and risk of spontaneous abortion. Epidemiology. 1997;8:509–514. 
  77. Rasch V. Cigarette, alcohol, and caffeine consumption: risk factors for spontaneous abortion. Acta Obstet Gynecol Scand. 2003;82:182–188. 
  78. Kline J, Levin B, Kinney A, et al. Cigarette smoking and spontaneous abortion of known karyotype: precise data but uncertain inferences. Am J Epidemiol. 1995;141:417–427. 
  79. Ness RB, Grisso JA, Hirschinger N. Cocaine and tobacco use and the risk of spontaneous abortion. N Engl J Med. 1999;340:333–339. 
  80.  Mills JL, Holmes LB, Aarons JH. Moderate caffeine use and the risk of spontaneous abortion and intrauterine growth retardation. JAMA. 1993;269:593–597. 
  81. Cnattingius S, Signorello LB, Anneren G, et al. Caffeine intake and the risk of first-trimester spontaneous abortion. N Engl J Med. 2000;343:1839–1845.
  82. Miller E, Hare JW, Cloherty JP, et al. Elevated maternal hemoglobin A1c in early pregnancy and major congenital anomalies in infants of diabetic mothers. N Engl J Med 1981; 304:1331.
  83. Mills JL, Simpson JL, Driscoll SG, et al. Incidence of spontaneous abortion among normal women and insulin-dependent diabetic women whose pregnancies were identified within 21 days of conception. N Engl J Med 1988; 319:1617.
  84. Craig LB, Ke RW, Kutteh WH. Increased prevalence of insulin resistance in women with a history of recurrent pregnancy loss. Fertil Steril 2002; 78:487.
  85. Kaandorp SP, Goddijn M, van der Post JA, Hutten BA, Verhoeve HR, Hamulyak K, et al:  Aspirina più eparina o aspirina da sola nelle donne con aborto spontaneo ricorrente. N Engl J Med, 2010, vol.  362  (pag. 1586-1596)
  86. Christiansen OB, Nybo Andersen AM, Bosch E, et al. Evidence-based investigations and treatments of recurrent pregnancy loss. Fertil Steril 2005; 83:821.
  87. Clemens B. Tempfer, Christine Kurz, Eva-Katrin Bentz, Gertrud Unfried, Katharina Walch, Ullrike Czizek, Johannes C. Huber, “A combination treatment of prednisone, aspirin, folate, and progesterone in women with idiopathic recurrent miscarriage: a matched-pair study”. Fertlity and Sterility Volume 86, Issue 1, Pages 145-148 (July 2006) 
  88. Rai R, Backos M, Baxter N, et al. Recurrent miscarriage-an aspirin a day?Hum Reprod. 2000;15:2220–2223. 
  89. Tulppala M, Marttunen M, Söderström-Anttila V, et al. Low-dose aspirin in prevention of miscarriage in women with unexplained or autoimmune related recurrent miscarriage: effect on prostacyclin and thromboxane A2 production. Hum Reprod. 1997;12:1567–1572.
  90. Haas DM, Ramsey PS. Progestogen for preventing miscarriage. Cochrane Database Syst Rev. 2008;
  91. Abate A. et al.: «17-alpha-idrossiprogesterone caproato and natural progesterone in assisted reproduction : a comparative study». Clin Exp Obstet Gynecol 1997 ; 24(4) : 190-192.
  92. Glueck CJ, Phillips H, Cameron D, et al. Continuing metformin throughout pregnancy in women with polycystic ovary syndrome appears to safely reduce first-trimester spontaneous abortion: a pilot study. Fertil Steril 2001; 75:46. 
  93. Jakubowicz DJ, Iuorno MJ, Jakubowicz S, et al. Effects of metformin on early pregnancy loss in the polycystic ovary syndrome. J Clin Endocrinol Metab 2002; 87:524.
  94. In women with RM, the finding of a normal karyotype in the products of conception is associated with a worse prognosis for a future pregnancy (Carp et al ., 2001 ) and a higher number of miscarriages ( Ogasawara et al ., 2000 ).
  95. In contrast, RM occurring due to chance is most commonly associated with sporadic fetal aneuploidy, and an abnormal karyotype of the products of conception ( Rai and Regan, 2006 ).
  96. Karen Sermon, André Van Steirteghem, ProfInge Liebaers: Preimplantation genetic diagnosis. The Lancet 2004;363,9421:1633-1641
  97. Hsin-FuChen,  Shee-UanChen,  Gwo-ChinMa, Sung-TsangHsieh,  Horng-DerTsai, Yu-hihYang,  MingChen: Preimplantation genetic diagnosis and screening: Current status and future challenges. Journal of the Formosan Medical Association. Volume 117, Issue 2, February 2018, Pages 94-100
  98. HerreroA .Cervero E. Mateu P. Mir M. E. Póo L. Rodrigo M. Vera C. Rubio:  Genetic Analysis of Human Preimplantation Embryos. Current Topics in Developmental Biology  Volume 120, 2016, Pages 421-447
  99. Baart  EB, Martini E, van den Berg I et al: Preimplantation genetic screening reveals a high incidence of aneuploidy and mosaicism in embryos from young women undergoing IVF. Hum Reprod 2006, 21: 223-233
  100. Staessen C, Michiels A, Verpoest W, Van der Elst J, Liebaers I, Devroey P: Does PGS improve pregnancy rates in young patients with single embryo transfer?. Hum Reprod.2007; 22 (abstr O-079).i31-i33
  101. Baruch S et al: Genetic testing of embryos: practices and perspectives of US in vitro fertilization clinics. Fertil Steril 2008;89:1053-105
  102. Loke, Y. and A. King, Immunological aspects of human implantation. J Reprod Fertil Steril, 2000. 55: p. 83-90.Johnson PM, Christmas PE, Vince GS: Immunological aspects of implantation and implantation failure. Hum Reprod 14 (suppl 2): 26– 36, 1999
  103. Loke YW, King A: Decidual natural-killer-cell interaction with trophoblast: Cytolysis or cytokine production? Biochem Soc Trans 28: 196– 198, 2000
  104. Vince, G. and P. Johnson, Leukocyte populations and cytokine regulation in human uteroplacental tissues. Biochem Soc Trans, 2000. 28: p. 191-5.
  105. Croy, B., et al., Decidual natural killer cells: key regulators of placental development (a review). J Reprod Immunol, 2002. 57: p. 151-68.
  106. Loke, Y. and A. King, Decidual natural-killer-cell interaction with trophoblast: cytolysis or cytokine production? Biochem Soc Trans, 2000. 28: p. 196-8.
  107. King, A., et al., Recognition of trophoblast HLA class I molecules by decidual NK cell receptors–a review. Placenta, 2000. 21 Suppl A: p. S81-5.
  108. Male V, Trundley A, Gardner L, et al: Natural killer cells in human pregnancy. Methods Mol Biol, 2010. 612: p. 447-463.
  109. Chazara O, Xiong S, Moffett A: Maternal KIR and fetal HLA-C: a fine balance. J Leukoc Biol, 2011. 90(4): p. 703-716.
  110. Gould DS, Ploegh HL, Schust DJ: I linfociti intraepiteliali del tratto riproduttivo femminile murino mostrano caratteristiche di selezione distinte dalle cellule T sia periferiche che da altre mucose. J Reprod Immunol 52: 85, 2001 Loke YW, King A: Aspetti immunologici dell’impianto umano. J Reprod Fertil Steril 55: 83–90, 200
  111. Lefrancois, L., et al., In prima linea: linfociti intraepiteliali come effettori primari dell’immunità intestinale. Springer Semin Immunopathol, 1997. 18: p. 463-75
  112. .Loke, Y. e A. King, aspetti immunologici dell’impianto umano. J Reprod Fertil Steril, 2000. 55: p. 83-90.
  113. Johnson PM, Christmas PE, Vince GS: Aspetti immunologici dell’impianto e fallimento dell’impianto. Hum Reprod 14 (suppl 2): ​​26–36, 1999 Loke YW, King A: Interazione decisiva tra cellula killer naturale e trofoblasto: citolisi o produzione di citochine? Biochem Soc Trans 28: 196–198, 2000
  114. Regan, L., PR Braude e PL Trembath, Influenza delle prestazioni riproduttive passate sul rischio di aborto spontaneo. British Medical Journal, 1989. 299: p. 541-545.
  115. Out, HJ, et al., Uno studio multicentrico prospettico e controllato sui rischi ostetrici delle donne in gravidanza con anticorpi antifosfolipidi. Am J Obstet Gynecol, 1992. 167 (1): p. 26-32
  116. Kutteh, WH, et al., Associazione di anticorpi anticardiolipina e perdita di gravidanza nelle donne con lupus eritematoso sistemico. Fertil Steril, 1993. 60 (3): p. 449-55.
  117. Hanly, JG, et al., Lupus gravidanza. Uno studio prospettico dei cambiamenti placentari. Arthritis Rheum, 1988. 31 (3): p. 358-66.
  118. Lockshin, MD, et al., Antibody to cardiolipin predice l’insufficienza placentare in pazienti gravide con lupus eritematoso sistemico. New England Journal of Medicine, 1985. 313: p. 152-156.
  119. Harris, EN, et al., Thrombocytopenia in SLE e relative malattie autoimmuni: associazione con l’anticorpo anticardiolipina. Br J Haematol, 1985. 59 (2): p. 227-30.
  120. Cariou, R., et al., Inibizione dell’attivazione della proteina C da parte delle cellule endoteliali in presenza di lupus anticoagulante. N Engl J Med, 1986. 314 (18): p. 1193-4.
  121. Freyssinet, JM, et al., Un anticoagulante del lupus IgM che neutralizza l’effetto potenziante del fosfolipide sull’attività della trombomodulina endoteliale purificata – un meccanismo per la trombosi. Thromb Haemost, 1986. 55 (3): p. 309-13.
  122. Gris, J., et al., Sindromi antifosfolipidiche e antiproteiche in donne non trombotiche e non autoimmuni con perdita fetale precoce primaria ricorrente inspiegabile. Studio di ostetricia ed ematologia di Nimes – NOHA. Thromb Haemost, 2000. 84 (2): p. 228-36.
  123. Rand, JH, et al., Riduzione dell’annessina-V (proteina anticoagulante placentare-I) sui villi placentari di donne con anticorpi antifosfolipidi e aborto spontaneo ricorrente. Am J Obstet Gynecol, 1994. 171 (6): p. 1566-72.
  124. Rand, JH, et al., Perdita di gravidanza nella sindrome da anticorpi antifosfolipidi – un possibile meccanismo trombogenico. N Engl J Med, 1997. 337 (3): p. 154-60.
  125. Cervera R, Balasch J: autoimmunità e perdite di gravidanze ricorrenti. Clin Rev Allergy Immunol, 2010. 39 (3): p. 148-152
  126. .Lyden, TW, AK Ng e NS Rote, Modulazione dell’espressione dell’epitopo della fosfatidilserina da parte delle cellule BeWo durante il trattamento con forskolina. Placenta, 1993. 14 (2): p. 177-86
  127. Bulla, R., et al., Inibizione dell’adesione del trofoblasto alle cellule endoteliali da parte dei sieri di donne con aborti spontanei ricorrenti. Am J Reprod Immunol, 1999. 42 (2): p. 116-23.
  128. Ernest JM, Marshburn PB, Kutteh WH: Obstetric antiphospholipid syndrome: an update on pathophysiology and management. Semin Reprod Med, 2011. 29 (6): p. 522-539.
  129. Fluhr, H., Bischof-Islami, D., Krenzer, S., Licht, P., Bischof, P., Zygmunt,
    M., 2008. Human chorionic gonadotropin stimulates matrix metalloproteinases-2 and -9 in cytotrophoblastic cells and decreases tissue inhibitor of metalloproteinases-1, -2, and -3 in decidualized endometrial stromal cells. Fertil. Steril. 90, 1390–1395.
  130. Prast, J., Saleh, L., Husslein, H., Sonderegger, S., Helmer, H., Knofler,
    M., 2008. Human chorionic gonadotropin stimulates trophoblast invasion through extracellularly regulated kinase and AKT signaling. Endocrinology 149, 979–987.
  131. Tapia-Pizarro, A., Argandona, F., Palomino, W.A., Devoto, L., 2013. Human chorionic gonadotropin (hCG) modulation of TIMP1 secretion by human endometrial stromal cells facilitates extravillous trophoblast invasion in vitro. Hum. Reprod. 28, 2215–2227.
  132. Siiteri, P., et al., Progesterone and maintenance of pregnancy: is progesterone nature’s immunosuppressant? Ann N Y Acad Sci, 1977. 286: p. 384-97.
  133. Jackson DL, Schust DJ: The Role of the Placenta in Autoimmune Disease and Early Pregnancy Loss. In Kay HH, Nelson DM, Wang Y, editors: The Placenta: From Development to Disease, Hoboken, NJ, 2011, Wiley-Blackwell, p. 215-221.
  134. Vassiliadou, N., L. Tucker, and D. Anderson, Progesterone-induced inhibition of chemokine receptor expression on peripheral blood mononuclear cells correlates with reduced HIV-1 infectability in vitro. J Immunol, 1999. 162(12): p. 7510-8.
  135. Runnebaum, B., I. Stober, and J. Zander, Progesterone, 20 alpha-dihydroprogesterone and 20 beta-dihydroprogesterone in mother and child at birth. Acta Endocrinol (Copenh), 1975. 80(3): p. 569-76
  136. Hunt, J., et al., Female steroid hormones regulate production of pro-inflammatory molecules in uterine leukocytes. J Reprod Immunol, 1997. 35(2): p. 87-99
  137. Robinson DP, Klein SL. Pregnancy and pregnancy-associated hormones alter immune responses and disease pathogenesis. Hormones and Behavior, 2012. 62(3): p. 263-71
  138. Polgár B, Nagy E, Mikó É, Varga P, Szekeres-Barthó J. Urinary Progesterone-Induced Blocking Factor Concentration Is Related to Pregnancy Outcome. Biology of Reproduction, 2004. 71(5): p. 1699-705.
  139. Hill, J.A., K. Polgar, and D.J. Anderson, T-helper 1-type immunity to trophoblast in women with recurrent spontaneous abortion. Jama, 1995. 273(24): p. 1933-6
  140. Knoferi, M., et al., Do female sex steroids adversely or beneficially affect the depressed immune responses in males after trauma-hemorrhage? Arch Surg, 2000. 135(4): p. 425-33.
  141. Gregory, M., et al., Estrogen mediates the sex difference in post-burn immunosuppression. J Endocrinol, 2000. 164(2): p. 129-38.
  142. Muller, V., et al., Sex hormones and gender-related differences: their influence on chronic renal allograft rejection. Kidney Int, 1999. 55(5): p. 2011-20.
  143. Salem, M., et al., beta-estradiol suppresses T cell-mediated delayed-type hypersensitivity through suppression of antigen-presenting cell function and Th1 induction. Int Arch Allergy Immunol, 2000. 121(2): p. 161-9.
  144. Correale, J., M. Arias, and W. Gilmore, Steroid hormone regulation of cytokine secretion by proteolipid protein-specific CD4+ T cell clones isolated from multiple sclerosis patients and normal control subjects. J Immunol, 1998. 161(7): p. 3365-74.
  145. Cutolo, M. and R. Wilder, Different roles for androgens and estrogens in the susceptibility to autoimmune rheumatic diseases. Rheum Dis Clin North Am, 2000. 26(4): p. 825-39.
  146. Somerset, D.A., et al., Normal human pregnancy is associated with an elevation in the immune suppressive CD25+ CD4+ regulatory T-cell subset. Immunology, 2004. 112(1): p. 38-43.
  147. Sasaki, Y., et al., Decidual and peripheral blood CD4+CD25+ regulatory T cells in ea
  148. rly pregnancy subjects and spontaneous abortion cases. Mol Hum Reprod, 2004. 10(5): p. 347-53.Prieto, G.A. and Y. Rosenstein, Oestradiol potentiates the suppressive function of human CD4 CD25 regulatory T cells by promoting their proliferation. Immunology, 2006. 118(1): p. 58-65.
  149. Kanik, K. and R. Wilder, Hormonal alterations in rheumatoid arthritis, including the effects of pregnancy. Rheum Dis Clin North Am, 2000. 26(4): p. 805-23.0
  150. Kutteh, W.H., Antiphospholipid antibody-associated recurrent pregnancy loss: treatment with heparin and low-dose aspirin is superior to low-dose aspirin alone. Am J Obstet Gynecol, 1996. 174(5): p. 1584-9.
  151. Pattison, N., et al., Does aspirin have a role in improving pregnancy outcome for women with antiphospholipid syndrome? A randomized controlled trial. Am J Obstet Gynecol, 2000. 183: p. 1008-12.
  152. Schisterman, Enrique F., et al. Preconception low-dose aspirin and pregnancy outcomes: results from the EAGeR randomised trial. The Lancet, 2014.
  153. Serum progesterone levels greater than 20 ng/dl on day of embryo transfer are associated with lower live birth and higher pregnancy loss rates. Kofinas JD, Blakemore J, McCulloh DH, Grifo J.J Assist Reprod Genet. 2015 Sep;32(9):1395-9. doi: 10.1007/s10815-015-0546-7. Epub 2015 Aug 4. 
  154. N S MacklonJ P M GeraedtsB C J M Fauser Conception to ongoing pregnancy: the ‘black box’ of early pregnancy loss. Human Reprod Update 2002;8(4):333-343

  155. Kaya, H. S., Hantak, A. M., Stubbs, L. J., Taylor, R. N., Bagchi, I. C., and Bagchi, M. K. (2015). Roles of progesterone receptor A and B isoforms during human endometrial decidualization. Mol. Endocrinol. 29, 882–895. 

  156. Kurihara, I., Lee, D. K., Petit, F. G., Jeong, J., Lee, K., Lydon, J. P., et al. (2007). COUP-TFII mediates progesterone regulation of uterine implantation by controlling ER activity. PLoS Genet. 3:e102. 
  157. Li, Q., Kannan, A., Demayo, F. J., Lydon, J. P., Cooke, P. S., Yamagishi, H., et al. (2011). The antiproliferative action of progesterone in uterine epithelium is mediated by Hand2. Science 331, 912–916. 
  158. Saccone G. et al, Meta-analysis Supports Progesterone for Recurrent Pregnancy Loss, Fertil Steril. 2017; 107: 430-438
  159. Wu, S. P., Li, R., and Demayo, F. J. (2018). Progesterone receptor regulation of uterine adaptation for pregnancy. Trends Endocrinol. Metab. 29, 481–491.  
  160. L. Skeith, et al. A meta-analysis of low-molecular-weight heparin to prevent pregnancy loss in women with inherited thrombophilia. 2016;127(13):1650-55; http://dx.doi.org/10.1182/blood-2015-12-626739.
  161. Dahlbäck B (July 2008). “Advances in understanding pathogenic mechanisms of thrombophilic disorders”. Blood112(1): 19–27.
  162. Bates SM, Greer IA, Pabinger I, Sofaer S, Hirsh J (June 2008). “Venous thromboembolism, thrombophilia, antithrombotic therapy, and pregnancy: American College of Chest Physicians Evidence-Based Clinical Practice Guidelines (8th Edition)”. Chest133 (6 Suppl): 844S–886S
  163. A J Butwick & B Carvalho  Anticoagulant and antithrombotic drugs in pregnancy: what are the anesthetic implications for labor and cesarean delivery? Journal of Perinatology volume 31, pages73–84(2011)

  164. Kominiarek MA, Angelopoulos SM, Shapiro NL, Studee L, Nutescu EA, Hibbard JU . Low-molecular-weight heparin in pregnancy: peripartum bleeding complications. J Perinatol 2007; 27: 329–334.

  165. Cleary-Goldman J, Bettes B, Robinson JN, Norwitz E, Schulkin J . Thrombophilia and the obstetric patient. Obstet Gynecol 2007; 110: 669–674.

  166. Greer I, Hunt BJ . Low molecular weight heparin in pregnancy: current issues. Br J Haematol 2005; 128: 593–601.

  167. Norris LA, Bonnar J, Smith MP, Steer PJ, Savidge G . Low molecular weight heparin (tinzaparin) therapy for moderate risk thromboprophylaxis during pregnancy. A pharmacokinetic study. Thromb Haemost 2004; 92: 791–796.

  168. Lebaudy C, Hulot JS, Amoura Z, Costedoat-Chalumeau N, Serreau R, Ankri A et al. Changes in enoxaparin pharmacokinetics during pregnancy and implications for antithrombotic therapeutic strategy. Clin Pharmacol Ther 2008; 84: 370–377.

  169. Roth GJ, Majerus PW . The mechanism of the effect of aspirin on human platelets. I. Acetylation of a particulate fraction protein. J Clin Invest 1975; 56: 624–632.

  170. Roth GJ, Stanford N, Majerus PW . Acetylation of prostaglandin synthase by aspirin. Proc Natl Acad Sci USA 1975; 72: 3073–3076.

  171. Rymark P, Berntorp E, Nordsjo P, Liedholm H, Melander A, Gennser G . Low-dose aspirin to pregnant women: single dose pharmacokinetics and influence of short term treatment on bleeding time. J Perinat Med 1994; 22: 205–211.66

  172. Orlikowski CE, Payne AJ, Moodley J, Rocke DA . Thrombelastography after aspirin ingestion in pregnant and non-pregnant subjects. Br J Anaesth 1992; 69: 159–161.

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1 commento

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